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Pour révéler et localiser l'ADN dans la cellule, avant observation Coloration au vert de méthyle pyronine Mettre l'échantillon dans un verre de montre contenant du vert de méthyle pyronine pendant 2min. Faire passer l'échantillon dans un second verre de montre contenant de l'eau distillée, pour rincer. Image: Schémathèque SVT L'ADN apparaîtra coloré en vert. Cellules d'épiderme d'oignon non colorées (x100) Cellules d'épiderme d'oignon colorées au vert de méthyle (x100) Noyau de cellule d'épiderme d'oignon coloré au vert de méthyle (x600) Réaction de Feulgen Mettre l'échantillon dans un tube contenant de l'acide chlorhydrique puis placer au bain marie à 60°C pendant 10min. Récuperer l'échantillon et le mettre dans le réactif de Schiff pendant 30min à 1h. L'ADN apparaîtra coloré en rose. L'intensité du rose permet d'estimer la quantité d'ADN.
bac S SVT 2015 Polynésie Partie 2. 1: (3 points) Neurone et fibre musculaire: communication nerveuse « Dans une série de leçons au Collège de France publiées en 1875, Claude Bernard exposa ses expériences sur l'action des anesthésiques. Et c'est également au Collège de France que fut enseigné le résultat de ses recherches sur les curares ». On se propose de retracer quelques étapes de la démarche scientifique suivie par Claude Bernard pour montrer l'action du curare sur le système nerveux: il réalise des expériences sur une préparation comportant un nerf moteur isolé et relié au muscle de la cuisse de grenouille qu'il innerve. document: l'expérience historique de Claude Bernard Soit deux verres de montre V et V' contenant une solution de curare et un muscle isolé de cuisse de grenouille avec son nerf moteur. Expérience 1: le nerf est placé dans le curare du verre de montre V et le muscle à l'extérieur du verre de montre. L'excitation du nerf provoque la contraction du muscle. Expérience 2: seul le muscle est plongé dans le curare du verre de montre V' et le nerf est laissé à l'extérieur du verre de montre.
Pour colorer la paroi pecto-cellulosique d'une cellule végétale, avant observation Réaction générale des polysaccharides: (acide périodique/ Schiff) Placer les échantillons 10 à 15 min dans un verre de montre contenant de l'acide périodique. Laver les échantillons plusieurs fois à l'eau du robinet dans une passoire. Colorer les échantillons 10 à 15 min dans le réactif de Schiff. Laver plusieurs fois à l'eau du robinet. Tous les polysaccharides prennent une coloration rouge: la paroi est colorée en rouge. Coloration carmino-vert de Mirande d'après Outils pour les activités pratiques en SVT Placer les échantillons 10 min dans un verre de montre contenant de l'eau de javel. Rincer deux fois 1 min dans un verre de montre contenant de l'eau distillée. Placer les échantillons 5 min dans un verre de montre contenant de l'acide acétique. Colorer les échantillons 2 min dans le carmino-vert de Mirande. Rincer 1 min dans un verre de montre contenant de l'eau distillée. Coloration carmin-vert d'iode Placer les échantillons 2 min dans un verre de montre contenant de l'acide acétique.
Observer à la loupe binoculaire. Relever les différents microfaune observés. Source image: